iBuen video! Deberias hacer unos sobre Urocultivo, coprocultivo,hemocultivo, etc. En TH-cam casi no se encuentran o son muy incompletos y no enseñan bien las técnicas o la correcta forma de REPORTAR los resultados.
1) ¿Qué debemos checar al iniciar a preparar medios de cultivo? 0:40 2)¿Cuál es la presentación en la que vienen la mayoría de los medios de cultivo? 0:53 3) ¿Por que es importante revisar los medios? 1:00 4) ¿A qué se refiere con medio higroscópico? 1:27 5) ¿Cuáles son las condiciones de almacenamiento? 1:33 6) ¿Qué se registra en la bitácora de preparación? 1:52 7) ¿Qué balanzas se utilizan en el pesado de medio? 4:13 8) ¿Cómo podemos ajustar el pH de el medio? 8:20 9) ¿Cuál es la clasificación de los medios de cultivo según la consistencia? 9:10 10) ¿Cuáles son las condiciones para dispensar un medio de cultivo? 15:00 11) ¿Cuál es la importancia de dar vuelta las cajas dispensadas de agar? 16:04 12) ¿Cómo podemos adicionar ingredientes antes del vaciado? 17:12
0:00 introducción 0:39 inicio de preparación 1:53 realización de cálculos 3:09 recipientes a utilizar 4:11 peso del medio de cultivo 5:26 disolver medio de cultivo 7:19 valor de pH 9:09 clasificación de medios de cultivo 9:49 clarificación 14:19 esterilización de medios 14:49 dispensar en su forma final 15:48 solidificación 17:05 casos particulares 20:06 conclusión y despedida
0:42 ¿Qué revisar en los medios de cultivos antes de su preparación? 1:55 Realización de cálculos así como el registros de datos en la bitácora 3:09 Selección de recipientes adecuados para realización del medio de cultivo 3:33 Preparación del medio de cultivo 5:10 Errores que se cometen al pesar el medio de cultivo 5:26 continuación de la preparación del medio de cultivo 7:30 Medición de pH 8:20 ajuste de pH 9:10 Clasificación de medios de cultivo según su consistencia 10:18 Clarificación del medio de cultivo que se preparo 15:03 dispensación del agar en cajas Petri 15:52 solidificación de los medios de cultivo 17:12 adición de ingredientes antes del vaciado de medios de cultivos estériles 19:11 como dejar solidificar un medio de cultivo en un tubo de ensayo para la formación de bisel (en pico de flauta) 20:08 comentario y cierre
Preparación de medios de cultivo 1. Revisión de fecha de caducidad y consistencia 0:42 2. Revisión de instrucciones 1:48 3. Realización de cálculos y llenado de bitácora 1:55 4. Elección de recipientes 3:09 5. Medición de volumen de agua destilada 3:30 6. Pesaje de medio de cultivo 4:10 7. Disolución de medio de cultivo 5:25 8. Medición/ajuste de pH 7:19 9. Clarificación del medio de cultivo 9:49 10. Esterilización del medio 14:20 11. Dispensación del medio en su forma final 14:56 12. Solidificación del medio 15:49 13. Errores de llenado de cajas Petri 16:21 14. Casos particulares 17:07
Gracias por sus videos profesor. Quisiera consultarle. ¿Al ajustar el pH de los medios, ya sea con ácido o hidróxido, estos requieren algún tratamiento en particular antes de ser añadidos a los medios? Por otro lado, ¿Cómo le hace para que los tubos durham le queden sin burbujas atrapadas? :'). Un abrazo maestro
Saludos profesor muy buena enseñanza, muy buena técnica además así como estos videos deben de ser muchos para q nuestros alumnos mejoren y tengan la capacidad de lograr muy buenos resultados... Loable su labor a compartir sus conocimientos.. Saludos desde Ecuador 🇪🇨
Excelente. Podrías hacer un video sobre el usp de la micropipeta, como obtener líquido de un tubo a traves de la micropipeta, en tu video lo mostraste y me pareció interesante.
Fernanda Eunice Vázquez Garibay ¿ Que tanto afecta el hecho utilizar un medio de cultivo caducado? ¿ o puede ser que el crecimiento de los microorganismos no cambie mucho?
Pues depende de los ingredientes del medio y las condiciones de almacenamiento. Es decir, un medio caduco pero nunca abierto puede funcionar mejor que uno dentro de fecha de caducidad pero mal almacenado. Con todo y eso, no se recomienda el empleo de medios caducos y además recuerda incluir siempre controles positivos y negativos para garantizar la funcionalidad del medio
Excelente tus videos. A mi me pasa que cada vez que dispenso el agar XLD ó MRSV en as placas se me forma mucha agua en la tapa de la placa, he probado con varias temperaturas pero aun no lo logro que no se me condense agua. Saludos y gracias.
Fíjate que una cosa que yo he notado es que cuando tengo que vaciar múltiples cajas las dejo solidificar apiladas (como en torres de 10), tardan mas pero sólo se forma condensación en la caja de hasta arriba. En el resto no. Cuando guardo mis cajas en el refrigerador también a veces se les forma condensación. Cuando no es demasiada no es problema (porque acuérdate que las placas siempre de manipulan con la tapa hacia abajo entonces el agua nunca debería caer sobre el cultivo), igual checa mi video de "Técnicas básicas de inoculación" para que veas a lo que me refiero. Y por último otra cosa que a veces hago es que en cuanto llego al laboratorio meto las cajas sin inocular a alguna incubadora mientras limpio y acondiciono el área. Ya cuando voy a trabajar las saco y la poca condensación que se formó pues se elimina en la mayoría de los casos. Igual como ya seguro has notado mientras menos caliente esté el agar cuando vacías pues menos condensación se forma. Así que quizá combinando todos estos consejos prácticos se te facilite el trabajo un poco mas. Saludos
LMIA SS20B - Ayón Gaytán Iliana Es muy necesario realizarle el orificio al papel aluminio que funciona como tapa al clarificar, es decir, ¿no altera el medio? Recuerdo que mi maestra de Microbiología nos dijo que ese era un error que todos cometíamos y que sólo era cuestión de estar atentos. Pero ahora que veo el vídeo creo que era más bien por la técnica, los orificios que hacían era del tamaño de una pluma.
Varias consideraciones: 1. Colocar el aluminio perforado reduce la cantidad de agua que se pierde, la perforación permitirá la liberación de vapor y con ello reducirá la presión que podría facilitar que se proyecte una vez alcance el punto de ebullición. 2. No debes preocuparte por la contaminación debido a que el medio será esterilizado posteriormente y en caso de que no, al estar liberando vapor por el orificio el ingreso de polvo y microorganismos no es posible. 3. Compra papel aluminio de buena calidad asi garantizas la menor cantidad de residuos de aluminio desprendiéndose en tu medio de cultivo arrastrados por la condensación . 4. No reutilizar las cubiertas de aluminio entre distintos medios. 5. Si lo preparas en botellas con tapa plástica, garantiza que estén limpias y déjalas un poco flojas durante la clarificación para reducir el incremento interno en la presión.
@@microcity873 Creo yo que no debemos fomentar el uso del aluminio como tapón, ya que con experiencia es muy práctico; pero para principiantes puede haber contaminación, además yo soy de la idea de enseñar de la forma "correcta", es decir sin los tips, ya que esos con la práctica los iras agarrando y creo es mejor enseñar con base en la norma, así si va y trabaja en otros lugares, podrá hacerlo de la manera que es y se evitará malos ratos. Hay que recordar que ese tip, lo puedes utilizar solo en medios que serán sólidos y que obviamente debes vaciar al instante; además todo medio debe ser incubado previo a su utilización para verificar la esterilidad, entonces un tapón de aluminio no servirá para un medio líquido.
Estamos hablando del tapón de papel aluminio durante la etapa de clarificación. Yo soy de la idea de enseñar con los tips porque se comparte la experiencia del profesor. De otro modo sólo los pongo a leer la norma o los libros y ya. A mí no me gusta que mi labor docente quede restringida a ser un “repetidor” de la información.
@@microcity873 Creo yo que hasta cierta parte, la labor docente tambien debe estar basada en mostrar y ayudar a entender las normas, por algo están y para algo las crearon; eso se debe conocer: si o si, ya que en algún trabajo tendrás que demostrar que las conoces; los tips son eso, tips para ayudar a facilitar el trabajo o reducir tiempos, pero no remplazan el conocimiento oficial. Ahora bien, yo no conocía ese medio de cultivo, no sabía que no se puede esterilizar en autoclave, hasta ahorita que lo investigué y que la forma de "esterilizarlo" es clarificando. En mi experiencia, cuando llegué a clarificar medios, no le colocaba ningún tapón, al contrario solo apuntaba la boca del matraz hacia un espacio donde no hubiera personas por si se proyectaba y con cuidado lo clarificaba, nunca tuve problemas con eso, pero cada quien trabaja conforme su experiencia; yo por ejemplo, siempre clarifiqué medio, un día se me olvido y lo metí así al autoclave, al sacarlo el medio quedó perfecto, desde ese día nunca volví a clarificar
Hola, comentando de nuevo: ¿Cuánto tiempo dirías que se tarda en calentar en placa un litro de medio? pregunto porque ya conseguí que se quitaran los guantes de asbesto en mi universidad y se compraron otros, pero los estudiantes los usan directo en el fuego sin cuidado y los están quemando. Comenté que sería mejor calentar en placa de calentamiento como he visto en muchos vídeos en youtube, pero dicen que no, porque es muy tardado. ¡Muchas gracias de antemano!
Vaciando el medio atemperado (no tan caliente, a los 50 grados máximo), una vez que solidifica invierte las cajas (tapa hacia abajo) y úsalos lo antes posible
Yo lo que hago es, vaciar el medio y dejar las cajas sin la tapa y esperar hasta la solidificación, esto solo puedes realizarlo en una campana de flujo laminar y mientras esperas a que solidifique poner luz UV.
¿Puede haber alguna afectación hacía los microorganismos si se utiliza un medio de cultivo que durante su preparación hirvió y se derramó? - Victor Manuel Alvarez Acosta
Que feo que se te anden proyectando los medios haha pero viéndolo friamente: a) Si el medio se esteriliza, entonces no. b) Si el medio NO se esteriliza, entonces si debido a que los ingredientes son sensibles al calor y si lo calentaste al punto de proyección entonces podría haber una afectación de los componentes.
muy bn explicado, x casualidad no habrás hecho un video de como colocar las muestras ya sea de uñaa o piel en esas placas? Es que solo encuentro videos donde ya esta hecho pero no esta el procedimiento :(
Hola, no he hecho un video sobre eso pero es fácil. La técnica de llama “impronta” que quiere decir que sólo lo vas a apoyar y a retirar. Como si fuera un sellito. Entonces abres tu caja de Petri con agar, apoyas tu dedo o uña unos segundos y luego la retiras. Así ya introduces las cajas a la incubadora. Dos recomendaciones para esa práctica. La primera: Para hacer rendir tus cajas, puedes dividirla en dos o cuatro partes (por fuera, con un marcador) así en una caja puedes poner hasta 4 muestras. La segunda: También por fuera, con el marcador haz alguna seña para recordar donde tuvo contacto tu muestra (por ejemplos haz un óvalo donde tocó el dedo) porque a veces al abrir las cajas puede colarse algún microorganismo que este en el aire. Entonces así ubicamos fácilmente el sitio donde las colonias que crezcan serán atribuidas a la muestra. 😉
Hola, no es del todo necesario pero no estaría mal. Puedes hacerlo con potenciómetro de superficie, para algunos medios como el Agar Papa Dextrosa acidificado si es una recomendación
Cuando se requiere hacer un ajuste en el pH por ejemplo que requiera acidificarse y se nos pase un poco, es recomendable después agregar NaOH para volver a ajustar? Itzel Netzeri Bautista Bernal - LMIA SS20B
Excelente video, el único que he visto que en un 100% está correcto. Solo una observación para ahorrarnos tiempo; siempre teóricamente nos dicen que en un medio sólido o semi sólido, hay que clarificar el medio, la realidad y a mi experiencia, es que no es tan necesario, ya que al momento de esterilizarlo, este clarificara durante el proceso; al final entendí porque clarificas el medio xld.
¿De qué material son los guantes que utilizas en el minuto 10:10? en mi universidad usan guantes de asbesto, pero preferiría no utilizarlos dado los daños que ocasiona este material a la salud.
que lindo video! es muy claro, yo que nunca he usado medios de cultivo pude darme una muy buena idea de los cuidados que hay que tener, muchas gracias.
iBuen video! Deberias hacer unos sobre Urocultivo, coprocultivo,hemocultivo, etc. En TH-cam casi no se encuentran o son muy incompletos y no enseñan bien las técnicas o la correcta forma de REPORTAR los resultados.
1) ¿Qué debemos checar al iniciar a preparar medios de cultivo? 0:40
2)¿Cuál es la presentación en la que vienen la mayoría de los medios de cultivo? 0:53
3) ¿Por que es importante revisar los medios? 1:00
4) ¿A qué se refiere con medio higroscópico? 1:27
5) ¿Cuáles son las condiciones de almacenamiento? 1:33
6) ¿Qué se registra en la bitácora de preparación? 1:52
7) ¿Qué balanzas se utilizan en el pesado de medio? 4:13
8) ¿Cómo podemos ajustar el pH de el medio? 8:20
9) ¿Cuál es la clasificación de los medios de cultivo según la consistencia? 9:10
10) ¿Cuáles son las condiciones para dispensar un medio de cultivo? 15:00
11) ¿Cuál es la importancia de dar vuelta las cajas dispensadas de agar? 16:04
12) ¿Cómo podemos adicionar ingredientes antes del vaciado? 17:12
0:00 introducción
0:39 inicio de preparación
1:53 realización de cálculos
3:09 recipientes a utilizar
4:11 peso del medio de cultivo
5:26 disolver medio de cultivo
7:19 valor de pH
9:09 clasificación de medios de cultivo
9:49 clarificación
14:19 esterilización de medios
14:49 dispensar en su forma final
15:48 solidificación
17:05 casos particulares
20:06 conclusión y despedida
LGVL-22B-D01
Súper bien explicado, gracias, profe.
0:42 ¿Qué revisar en los medios de cultivos antes de su preparación?
1:55 Realización de cálculos así como el registros de datos en la bitácora
3:09 Selección de recipientes adecuados para realización del medio de cultivo
3:33 Preparación del medio de cultivo
5:10 Errores que se cometen al pesar el medio de cultivo
5:26 continuación de la preparación del medio de cultivo
7:30 Medición de pH
8:20 ajuste de pH
9:10 Clasificación de medios de cultivo según su consistencia
10:18 Clarificación del medio de cultivo que se preparo
15:03 dispensación del agar en cajas Petri
15:52 solidificación de los medios de cultivo
17:12 adición de ingredientes antes del vaciado de medios de cultivos estériles
19:11 como dejar solidificar un medio de cultivo en un tubo de ensayo para la formación de bisel (en pico de flauta)
20:08 comentario y cierre
Preparación de medios de cultivo
1. Revisión de fecha de caducidad y consistencia 0:42
2. Revisión de instrucciones 1:48
3. Realización de cálculos y llenado de bitácora 1:55
4. Elección de recipientes 3:09
5. Medición de volumen de agua destilada 3:30
6. Pesaje de medio de cultivo 4:10
7. Disolución de medio de cultivo 5:25
8. Medición/ajuste de pH 7:19
9. Clarificación del medio de cultivo 9:49
10. Esterilización del medio 14:20
11. Dispensación del medio en su forma final 14:56
12. Solidificación del medio 15:49
13. Errores de llenado de cajas Petri 16:21
14. Casos particulares 17:07
Gracias por sus videos profesor. Quisiera consultarle. ¿Al ajustar el pH de los medios, ya sea con ácido o hidróxido, estos requieren algún tratamiento en particular antes de ser añadidos a los medios? Por otro lado, ¿Cómo le hace para que los tubos durham le queden sin burbujas atrapadas? :'). Un abrazo maestro
Saludos profesor muy buena enseñanza, muy buena técnica además así como estos videos deben de ser muchos para q nuestros alumnos mejoren y tengan la capacidad de lograr muy buenos resultados... Loable su labor a compartir sus conocimientos..
Saludos desde Ecuador 🇪🇨
Muchas gracias por su Excelente explicación profe, súper producción.👌
Temperatura de vaciado 45 grados no dijo
Como de elaboran los cultivos mesofilos y termofilos?
Excelente. Podrías hacer un video sobre el usp de la micropipeta, como obtener líquido de un tubo a traves de la micropipeta, en tu video lo mostraste y me pareció interesante.
DMJA-22B-D03, gracias.
Fernanda Eunice Vázquez Garibay
¿ Que tanto afecta el hecho utilizar un medio de cultivo caducado? ¿ o puede ser que el crecimiento de los microorganismos no cambie mucho?
Pues depende de los ingredientes del medio y las condiciones de almacenamiento. Es decir, un medio caduco pero nunca abierto puede funcionar mejor que uno dentro de fecha de caducidad pero mal almacenado.
Con todo y eso, no se recomienda el empleo de medios caducos y además recuerda incluir siempre controles positivos y negativos para garantizar la funcionalidad del medio
Excelente felicitaciones bueno aporte saludos desde Ecuador.
RMB-22B-D03
Excelente explicación, profe, gracias!
Donde conseguiste ese agar agar ?
Magnifico vídeo
Wow, excelente video, súper completo y la edición ni se diga, chulada.
Excelente tus videos.
A mi me pasa que cada vez que dispenso el agar XLD ó MRSV en as placas se me forma mucha agua en la tapa de la placa, he probado con varias temperaturas pero aun no lo logro que no se me condense agua.
Saludos y gracias.
Fíjate que una cosa que yo he notado es que cuando tengo que vaciar múltiples cajas las dejo solidificar apiladas (como en torres de 10), tardan mas pero sólo se forma condensación en la caja de hasta arriba. En el resto no.
Cuando guardo mis cajas en el refrigerador también a veces se les forma condensación. Cuando no es demasiada no es problema (porque acuérdate que las placas siempre de manipulan con la tapa hacia abajo entonces el agua nunca debería caer sobre el cultivo), igual checa mi video de "Técnicas básicas de inoculación" para que veas a lo que me refiero.
Y por último otra cosa que a veces hago es que en cuanto llego al laboratorio meto las cajas sin inocular a alguna incubadora mientras limpio y acondiciono el área. Ya cuando voy a trabajar las saco y la poca condensación que se formó pues se elimina en la mayoría de los casos.
Igual como ya seguro has notado mientras menos caliente esté el agar cuando vacías pues menos condensación se forma. Así que quizá combinando todos estos consejos prácticos se te facilite el trabajo un poco mas.
Saludos
LMIA SS20B - Ayón Gaytán Iliana
Es muy necesario realizarle el orificio al papel aluminio que funciona como tapa al clarificar, es decir, ¿no altera el medio?
Recuerdo que mi maestra de Microbiología nos dijo que ese era un error que todos cometíamos y que sólo era cuestión de estar atentos. Pero ahora que veo el vídeo creo que era más bien por la técnica, los orificios que hacían era del tamaño de una pluma.
Varias consideraciones:
1. Colocar el aluminio perforado reduce la cantidad de agua que se pierde, la perforación permitirá la liberación de vapor y con ello reducirá la presión que podría facilitar que se proyecte una vez alcance el punto de ebullición.
2. No debes preocuparte por la contaminación debido a que el medio será esterilizado posteriormente y en caso de que no, al estar liberando vapor por el orificio el ingreso de polvo y microorganismos no es posible.
3. Compra papel aluminio de buena calidad asi garantizas la menor cantidad de residuos de aluminio desprendiéndose en tu medio de cultivo arrastrados por la condensación .
4. No reutilizar las cubiertas de aluminio entre distintos medios.
5. Si lo preparas en botellas con tapa plástica, garantiza que estén limpias y déjalas un poco flojas durante la clarificación para reducir el incremento interno en la presión.
@@microcity873 Creo yo que no debemos fomentar el uso del aluminio como tapón, ya que con experiencia es muy práctico; pero para principiantes puede haber contaminación, además yo soy de la idea de enseñar de la forma "correcta", es decir sin los tips, ya que esos con la práctica los iras agarrando y creo es mejor enseñar con base en la norma, así si va y trabaja en otros lugares, podrá hacerlo de la manera que es y se evitará malos ratos.
Hay que recordar que ese tip, lo puedes utilizar solo en medios que serán sólidos y que obviamente debes vaciar al instante; además todo medio debe ser incubado previo a su utilización para verificar la esterilidad, entonces un tapón de aluminio no servirá para un medio líquido.
Estamos hablando del tapón de papel aluminio durante la etapa de clarificación. Yo soy de la idea de enseñar con los tips porque se comparte la experiencia del profesor. De otro modo sólo los pongo a leer la norma o los libros y ya.
A mí no me gusta que mi labor docente quede restringida a ser un “repetidor” de la información.
@@microcity873 Creo yo que hasta cierta parte, la labor docente tambien debe estar basada en mostrar y ayudar a entender las normas, por algo están y para algo las crearon; eso se debe conocer: si o si, ya que en algún trabajo tendrás que demostrar que las conoces; los tips son eso, tips para ayudar a facilitar el trabajo o reducir tiempos, pero no remplazan el conocimiento oficial.
Ahora bien, yo no conocía ese medio de cultivo, no sabía que no se puede esterilizar en autoclave, hasta ahorita que lo investigué y que la forma de "esterilizarlo" es clarificando. En mi experiencia, cuando llegué a clarificar medios, no le colocaba ningún tapón, al contrario solo apuntaba la boca del matraz hacia un espacio donde no hubiera personas por si se proyectaba y con cuidado lo clarificaba, nunca tuve problemas con eso, pero cada quien trabaja conforme su experiencia; yo por ejemplo, siempre clarifiqué medio, un día se me olvido y lo metí así al autoclave, al sacarlo el medio quedó perfecto, desde ese día nunca volví a clarificar
Super¡ muy bien explicado
SFKA-22B-D03
SHAG-22B-D03
GSAI-22B-D03
SRAG-22B-D03
SEVL-22B-D03
SGCE-22B-D03
HLAM-22B-D03
RTIY-22B-D03
ASRN-22B-D03
MIBK-22B-D01
VBMF-22B-D03
RGRJ-22B-D03
Que eso jugar en casa
BGDM-22B-D03
DRAB-22B-D03
DRAA-22B-D03
1- EEP
Hola, comentando de nuevo: ¿Cuánto tiempo dirías que se tarda en calentar en placa un litro de medio? pregunto porque ya conseguí que se quitaran los guantes de asbesto en mi universidad y se compraron otros, pero los estudiantes los usan directo en el fuego sin cuidado y los están quemando. Comenté que sería mejor calentar en placa de calentamiento como he visto en muchos vídeos en youtube, pero dicen que no, porque es muy tardado. ¡Muchas gracias de antemano!
Hola. Pues las parrillas de termo agitación tienen manera de regular la temperatura. Si lo pones fuerte pues es mas rápido.
1-CVFE
Excelente explicación!!!!
Me encantó! Super detallado ,👏👏👏
Excelente explicación, muy buen tono al hablar más claro pa dónde!
SGS-22B-D03
Gracias
Esas tomas en cámara lenta se ven bien sexys xD. ❤️
1-MCA
1-GOL
1-TAN
Muy buena explicación. Muchas gracias por difundir sus conocimientos de manera clara y detallada. 🤩👍
KSNG-22B-D01
RCAL-22B-D01
CMAG-22B-D01
UPSG-22B-D01
RGKS-22B-D01
DVRA-22B-D01
GMO-22B-D01
LCE-22B-D01
PMR-22B-D01
LMIA SS20B
Andres Guerrero Olmedo
¿Como podemos reducir o evitar que el agua se condense en la caja petri?
Vaciando el medio atemperado (no tan caliente, a los 50 grados máximo), una vez que solidifica invierte las cajas (tapa hacia abajo) y úsalos lo antes posible
Yo lo que hago es, vaciar el medio y dejar las cajas sin la tapa y esperar hasta la solidificación, esto solo puedes realizarlo en una campana de flujo laminar y mientras esperas a que solidifique poner luz UV.
FEOA-22B-D03
¿Puede haber alguna afectación hacía los microorganismos si se utiliza un medio de cultivo que durante su preparación hirvió y se derramó?
- Victor Manuel Alvarez Acosta
Que feo que se te anden proyectando los medios haha pero viéndolo friamente:
a) Si el medio se esteriliza, entonces no.
b) Si el medio NO se esteriliza, entonces si debido a que los ingredientes son sensibles al calor y si lo calentaste al punto de proyección entonces podría haber una afectación de los componentes.
1-MGNE
muy bn explicado, x casualidad no habrás hecho un video de como colocar las muestras ya sea de uñaa o piel en esas placas?
Es que solo encuentro videos donde ya esta hecho pero no esta el procedimiento :(
Hola, no he hecho un video sobre eso pero es fácil. La técnica de llama “impronta” que quiere decir que sólo lo vas a apoyar y a retirar. Como si fuera un sellito.
Entonces abres tu caja de Petri con agar, apoyas tu dedo o uña unos segundos y luego la retiras. Así ya introduces las cajas a la incubadora.
Dos recomendaciones para esa práctica. La primera: Para hacer rendir tus cajas, puedes dividirla en dos o cuatro partes (por fuera, con un marcador) así en una caja puedes poner hasta 4 muestras.
La segunda: También por fuera, con el marcador haz alguna seña para recordar donde tuvo contacto tu muestra (por ejemplos haz un óvalo donde tocó el dedo) porque a veces al abrir las cajas puede colarse algún microorganismo que este en el aire. Entonces así ubicamos fácilmente el sitio donde las colonias que crezcan serán atribuidas a la muestra. 😉
1-GCA
1-GOKY
1-RDBE
1-PGAC
1-OJCR
1-MGM
VAEU-22B-D03
1-RDAD
1-HCAA
El ph no habría que comprobar después de esterilizar?
Hola, no es del todo necesario pero no estaría mal. Puedes hacerlo con potenciómetro de superficie, para algunos medios como el Agar Papa Dextrosa acidificado si es una recomendación
DAF-22B-D03
1-VMFG
woow!! buenardoo, gracias
1-MZDE
SCZ-22B-D01
SASC-22B-D03
DAOA-22B-D03
Gracias por su información.
Cuando se requiere hacer un ajuste en el pH por ejemplo que requiera acidificarse y se nos pase un poco, es recomendable después agregar NaOH para volver a ajustar?
Itzel Netzeri Bautista Bernal - LMIA SS20B
pues en principio si, pero me preocupa eso de “un poco”. La idea es ir acidificando con paciencia para no llegar a este escenario
1-ARDE
GLA-22B-D01
1-FSAB
1-AMHA
ILJA-22B-D01
RHKM-22B-D01 Excelente video saludos.
APDLTO - 22B - D01
Gracias profe!
AGJA-1
1-EDCJ
Excelente video, el único que he visto que en un 100% está correcto.
Solo una observación para ahorrarnos tiempo; siempre teóricamente nos dicen que en un medio sólido o semi sólido, hay que clarificar el medio, la realidad y a mi experiencia, es que no es tan necesario, ya que al momento de esterilizarlo, este clarificara durante el proceso; al final entendí porque clarificas el medio xld.
¿De qué material son los guantes que utilizas en el minuto 10:10? en mi universidad usan guantes de asbesto, pero preferiría no utilizarlos dado los daños que ocasiona este material a la salud.
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@@microcity873 Graciass
PMAL-22B-D01
Excelente vídeo, profe, muy entendible. Graciassss c:
1-EPJD
Muy buen video profesor!
FOPL-22B-D01
NPLA -22-B-D03
que lindo video! es muy claro, yo que nunca he usado medios de cultivo pude darme una muy buena idea de los cuidados que hay que tener, muchas gracias.